Biomet
One Surgeon. One Patient.
 

Informationen für Medizinische Fachkräfte

MarrowStim

MarrowStim

Das MarrowStim Konzentrationssystem ist eine innovative Technologie zur Entnahme und Konzentration von autogenen Stammzellen aus dem Knochenmark, welche mit der MarrowStim Aspirations-Nadel gewonnen werden. Das äußerst anwendungsfreundliche Kit enthält alle Materialien zur Entnahme und zur Konzentration der Stammzellen. Transplantate und Aspirate aus dem Beckenkamm sind wegen der darin enthaltenen hochpotenten Stammzellen besonders geeignet. Das Transplantat versorgt die Implantationsstelle mit Zellen und liefert die für die erfolgreiche Knochenheilung und das Wachstum benötigten Signale. Allerdings lässt sich die Verwendung dieses Transplantats wegen Morbidität im Empfängerareal in Verbindung mit einem komplizierten und zeitaufwändigen Entnahmeverfahren bei vielen Eingriffen nur schwer rechtfertigen. Infolgedessen spricht vieles für autologes Knochenmarkaspirat (BMA) als osteogene Zellquelle bei Knochentransplantaten.7

 

Was leistet die Marrow Stim Technologie?

Über das Knochenmark-Aspirat werden alle patientenindividuellen Stammzelltypen intraoperativ gewonnen und unterschiedlich stark konzentriert: hämatopoetische, mesenchymale und endotheliale Stammzellen. Daher sind sowohl orthopädisch/unfallchirurgische als auch für gefäßchirurgische Indikationen denkbar.
Entgegen dem Basislevel werden die TNC/MNC auf den 6-7-fachen Wert konzentriert. Die Entnahme und die 15-minütige Zentrifugation erlaubt eine einfache und schnelle „Point of care“-Nutzung.

Anwendung des Thrombozytenkonzentrats

  • Knorpeldefekte
  • Bone Grafting
  • Pseudarthrose
  • Non Union 1-3
  • Osteonekrose 4-5
  • Allg. Knochendefekte
  • Verwendung mit Bone Graft oder bei Spinalfusion 8-10
  • PAVK (in Studie)

Kombination des Thrombozytenkonzentrats mit Knochenersatzmaterial/Spongiosa

Das mit MarrowStim gewonnene Stammzellkonzentrat kann in Kombination mit Spongiosa oder unseren Knochenersatzmaterialien wie Calcibon Granules oder Endobon angewandt werden. Die Kombination von osteoinduktivem Potential mit der osteokonduktiven Matrix der Konchenersatzmaterialien kann zu einer beschleunigten Mineralisation und einer verbesserten trabekulären Knochendichte führen. Dies kann auch sehr vorteilhaft als Füllmaterial von Cages sein.

Kombination des Thrombozytenkonzentrates mit Wachstumsfaktoren / PRP

Zur Ergänzung können Wachstumsfaktoren mit Hilfe des GPS Systems gewonnen, konzentriert und aktiviert werden. Damit werden alle zur Geweberegeneration benötigten Grundlagen ausgeschöpft.
Im Gegensatz zu den rekombinanten Wachstumsfaktoren wie BMPs (bone morphogenetic proteins), welche ausschließlich auf die knöcherne Regeneration wirken, beschleunigt das Stammzellkonzentrat different den Heilungsprozess von allen Gewebearten (Knochen, Gefäße und Weichteile).

Vorteile für den Patienten

  • Minimalinvasive Entnahme von Stammzellen aus dem Knochenmark
  • Weniger Schmerzen an Entnahmestelle
  • Point-of-Care-Entnahme
  • Höhere Wahrscheinlichkeit der knöchernen Heilung

Vorteile für den Chirurgen:

  • Ein System mit vielen Optionen
  • Maximal hohe Ausbeute an Stammzellen (ZNC, MNC)
  • Konformität des Konzentrats
  • Einfache Anwendung mittels Aspirations-Kit
  • Kann die Einheilung des Knochentransplantats verbessern
  • Kann das Milieu für die Knochenheilung optimieren
  • Autogenes Material
Weitere Informationen zu den Produkten erhalten Mediziner von ihrem Biomet Deutschland-Außendienst-Mitarbeiter oder von einer der lokalen Niederlassungen unseres Unternehmens. Falls Sie als Patient Fragen zu unseren Produkten haben, wenden Sie sich bitte an Ihren behandelnden Arzt
Rechtlicher Hinweis
Biomet praktiziert weder im medizinischen Bereich, noch gibt Biomet für die spezifische Anwendung am Patienten Empfehlungen für diese oder andere Behandlungstechniken ab. Der die Therapie durchführende Arzt ist in jedem individuellen Patientenfall für die Bestimmung und Durchführung der angemessenen Versorgung verantwortlich. Biomet übernimmt hierfür keine Verantwortung
 

 Literatur:

 
 1. Hernigou P, Poignard A, Beaujean F, Rouard H. Percutaneous autologous bone-marrow grafting for nonunions. Influence of the number and concentration of progenitor cells. J Bone Joint Surg Am 2005 July;87(7):1430-7.
2. Hernigou P, Mathieu G, Poignard A, Manicom O, Beaujean F, Rouard H. Percutaneous autologous bone-marrow grafting for nonunions. Surgical technique. J Bone Joint Surg Am 2006 September;88 Suppl 1 Pt 2:322-7.
3. Connolly J, Guse R, Lippiello L, Dehne R. Development of an osteogenic bone-marrow preparation. J Bone Joint Surg Am 1989 June;71(5):684-91.
4. Gangji V, Hazeur JP, Matos C, DeMaertelaer V, Toungouz M, Lambermont M. Treatment of osteonecrosis of the femoral head with implantation of autologous bone marrow cells. A pilot study. J Bone Joint Surg Am 2004 June;86-A(6):1153-1160.
5. Hernigou P, Poignard A, Manicom O, Mathieu G, Rouard H. The use of percutaneous autologous bone marrow transplantation in nonunion and avascular necrosis of bone. J Bone Joint Surg Br 2005 July;87(7):896-902.
6. Connolly JF. Clinical use of marrow osteoprogenitor cells to stimulate osteogenesis. Clin Orthop Relat Res 1998 October;(355 Suppl):S257- S266.
7. Block JE. The role and effectiveness of bone marrow in osseous regeneration. Med Hypotheses 2005;65(4):740-7.
8. Brodke D, Pedrozo HA, Kapur TA, Attawia M, Kraus KH, Holy CE et al. Bone grafts prepared with selective cell retention technology heal canine segmental defects as effectively as autograft. J Orthop Res 2006 May;24(5):857-66.
9. Muschler GF, Matsukura Y, Nitto H, Boehm CA, Valdevit AD, Kambic HE, Davros WJ, Easley KA, Powell KA. Selective retention of bone marrow-derived cells to enhance spinal fusion. Clin Orthop Relat Res 2005 March;(432):242-51.
10. Muschler GF, Nitto H, Matsukura Y, Boehm C, Valdevit A, Kambic H, Davros W, Powell K, Easley K. Spine fusion using cell matrix composites enriched in bone marrow-derived cells. Clin Orthop Relat
Res 2003 February;(407):102-18.
11. Tiedeman JJ, Garvin KL, Kile TA, Connolly JF. The role of a composite, demineralized bone matrix and bone marrow in the treatment of osseous defects. Orthopedics 1995 December;18(12):1153-1158. 12. Kohlman-Trigoboff D, Lawson JH, Murphy MP. Stem cell use in a patient with an ischemic foot ulcer: a case study. J Vasc Nurs 2006 June;24(2):56-61.
13. Badiavas EV, Falanga V. Treatment of chronic wounds with bone marrow-derived cells. Arch Dermatol 2003 April;139(4):510-6.
14. Bystrov AV, Polyaev YA, Pogodina MA, Rasulov MF, Krasheninnikov ME, Onishchenko NA. Use of autologous bone marrow mesenchymal stem cells for healing of free full-thickness skin graft in a zone with pronounced hypoperfusion of soft tissues caused by arteriovenous shunting. Bull Exp Biol Med 2006 July;142(1):123-8.
15. Swift MJ, Welch ZR, McKale JM, Woodell-May J. Efficient harvest of a mononuclear cell-rich fraction from aspirated bone marrow. Presented at the 53rd Annual Meeting of the Orthopaedic Research Society, February 11-14, 2007. Poster #1287
16. Siwach RC, Sangwan SS, Singh R, Goel A. Role of percutaneous bone marrow grafting in delayed unions, non-unions and poor regenerates. Indian J Med Sci 2001 June;55(6):326-36.
17. Muschler GF. Bone Grafting. Physician’s Weekly 2004 April 19;21(15).
18. Adachi N, Ochi M, Deie M, Ito Y. Transplant of mesenchymal stem cells and hydroxyapatite ceramics to treat severe osteochondral damage after septic arthritis of the knee. J Rheumatol 2005 August;32(8):1615-8.
19. Wakitani S, Imoto K, Yamamoto T, Saito M, Murata N, Yoneda M. Human autologous culture expanded bone marrow mesenchymal cell transplantation for repair of cartilage defects in osteoarthritic knees. Osteoarthritis Cartilage 2002 March;10(3):199-206.
20. Johnstone B, Yoo JU. Autologous mesenchymal progenitor cells in articular cartilage repair. Clin Orthop 1999 October;(367 Suppl):S156- S162.
21. Sanchez M, Azofra J, Anitua E, Andia I, Padilla S, Santisteban J et al. Plasma rich in growth factors to treat an articular cartilage avulsion: a case report. Med Sci Sports Exerc 2003 October;35(10):1648-52. 22. Docquier PL, Delloye C. Treatment of aneurysmal bone cysts by introduction of demineralized bone and autogenous bone marrow. J Bone Joint Surg Am 2005 October;87(10):2253-8.
23. Rougraff BT, Kling TJ. Treatment of active unicameral bone cysts with percutaneous injection of demineralized bone matrix and autogenous bone marrow. J Bone Joint Surg Am 2002 June;84- A(6):921-9.
24. Yamada Y, Boo JS, Ozawa R, Nagasaka T, Okazaki Y, Hata K et al. Bone regeneration following injection of mesenchymal stem cells and fibrin glue with a biodegradable scaffold. J Craniomaxillofac Surg 2003 February;31(1):27-33.
25. Chong AK, Ang AD, Goh JC, Hui JH, Lim AY, Lee EH et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells influence early tendonhealing in a rabbit achilles tendon model. J Bone Joint Surg Am 2007 January;89(1):74-81.
26. Centeno CJ, Kisiday J, Freeman M, Schultz JR. Partial regeneration of the human hip via autologous bone marrow nucleated cell transfer: a case study. Pain Physician 2006 July;9(3):253-6.
27. Yamada Y, Ueda M, Naiki T, Takahashi M, Hata K, Nagasaka T. Autogenous injectable bone for regeneration with mesenchymal stem cells and platelet-rich plasma: tissue-engineered bone regeneration. Tissue Eng 2004 May;10(5-6):955-64.
28. Yamada Y, Ueda M, Hibi H, Baba S. A novel approach to periodontal tissue regeneration with mesenchymal stem cells and platelet-rich plasma using tissue engineering technology: a clinical case report. Int J Periodontics Restorative Dent 2006 August;26(4):363-9.
29. Yamada Y, Ueda M, Naiki T, Nagasaka T. Tissue-engineered injectable bone regeneration for osseointegrated dental implants. Clin Oral Implants Res 2004 October;15(5):589-97.
30. Oyama T, Nishimoto S, Takeda M. Alveolar bone regeneration utilizing b-TCP and platelet-rich plasma (PRP) derived from bone marrow aspirate. Ann Plast Surg 2005 February;54(2):222-3.
31. Haynesworth SE, Kadiyala S, Liang L, Bruder SP. Mitogenic stimulation of human mesenchymal stem cells by platelet releasate suggest a mechanism for enhancement of bone repair by platelet concentrates. Transactions of the 48th Annual Meeting of the Orthopaedic Research Society 2002;42:0462..
32. Lucarelli E, Beccheroni A, Donati D, Sangiorgi L, Cenacchi A, Del Vento AM et al. Platelet-derived growth factors enhance proliferation of human stromal stem cells. Biomaterials 2003 August;24(18):3095-100.
33. Lucarelli E, Fini M, Beccheroni A, Giavaresi G, Di BC, Aldini NN et al. Stromal stem cells and platelet-rich plasma improve bone allograft integration. Clin Orthop Relat Res 2005 June;(435):62-8.